本发明属于生物技术领域，具体涉及大豆rna提取物在制备预防及治疗肠炎的药物中的应用。
背景技术：
肠炎类疾病为多发病和常见病，严重影响人们的身体健康，该类疾病顽固难愈、病程长、易反复发作。其中，结肠炎在肠炎性疾病中较多，分为急性期和慢性期两类。急性期患者，若得到恰当控制，其症状可以缓解并最终治愈，反之则炎症反复发作，最后转变成慢性，增加转变为结肠癌的风险，是胃肠道最严重的疾病之一，被世界卫生组织列为现代难治疾病之一。因此，有效的预防手段对于肠炎的预防和治疗具有重要意义。
micrornas（mirnas）是一种含有19-24个核苷酸的单链小rnas，可通过与靶基因碱基互补配对调控靶基因的表达。研究显示超过60％的基因受mirnas调控，参与了大多数生理过程的调控。在早期的研究中，人们已经注意到植物性饮食中含有大量的核酸类成分，然而直到近几年，人体中的植物mirnas才被发现，mirnas的跨物种调控现象引起了研究人员的重视。目前，植物来源的mirnas已被发现与心血管疾病、流感、乳腺癌等多种疾病的治疗紧密相关，这些研究揭示了植物mirnas在未来疾病治疗中的新地位。
现有技术中缺乏高效、安全的用于预防及治疗肠炎的药物。
技术实现要素：
本发明的目的是提供大豆rna提取物在制备预防及治疗肠炎的药物中的应用，大豆rna提取物具有安全、高效、来源广泛的特点。
本发明的另一目的是提供大豆rna提取物在制备具有预防和治疗肠炎性疾病的功能性食品中的应用。
本发明的又一目的是提供用于预防及治疗肠炎的药物或功能性食品。
本发明的目的采用如下技术方案实现：
本发明提供大豆rna提取物在制备预防及治疗肠炎的药物中的应用。
在本发明中，所述大豆rna提取物含有序列如seqidno:1所示的mirna。
在本发明中，所述所述肠炎包括结肠炎和其他肠炎性疾病。
本发明还提供大豆rna提取物在制备具有预防和治疗肠炎性疾病的功能性食品中的应用。
在本发明中，所述大豆rna提取物含有序列如seqidno:1所示的mirna。
本发明还提供用于预防及治疗肠炎的药物或功能性食品，含有大豆rna提取物。
本发明还提供序列如seqidno:1所示的mirna在制备预防及治疗肠炎的药物中的应用，用于预防及治疗肠炎的药物或功能性食品，其特征在于含有序列如seqidno:1所示的mirna。
在本发明中，所述大豆rna提取物含有序列如seqidno:1所示的mirna。
体外实验表明大豆rna提取物及gma-mir159a对正常结肠上皮细胞ncm460增殖活性无影响，具有良好的安全性。体内实验结果表明大豆rna能够显著改善结肠炎模型小鼠的结肠病理及炎症水平，提高了小鼠的健康水平。因此，大豆rna提取物及gam-mir159a能够有效预防和治疗肠炎性相关疾病。大豆rna提取物及gam-mir159a直接来源于大豆，具有特异性靶向，具有安全、高效、来源广泛的特点。大豆rna提取物及gam-mir159a提取纯化简便，在食品、医药等领域具有广阔的前景，因此可以应用于制备预防及治疗肠炎的药物或功能性食品。
附图说明
图1为大豆rna提取物中mirnas家族种类及水平（top15），其中横坐标为mirnas家族名称，纵坐标为拷贝数。
图2为大豆rna提取物及gma-mir159a对人正常结肠上皮细胞ncm460增殖活性的影响。
图3为大豆rna提取物及gma-mir159a对结肠炎模型小鼠结肠长度的影响。*：与正常组相比有显著差异（p<0.05）；**：与正常组相比有极显著差异（p<0.01）；#：与模型 乱序rna组相比有显著差异（p<0.05）；##：与模型 乱序rna组相比有极显著差异（p<0.01），下同。
图4为大豆rna提取物及gma-mir159a对结肠炎模型小鼠结肠病理的影响。
图5为大豆rna提取物及gma-mir159a对结肠炎模型小鼠结肠中cd11b蛋白表达的影响。
图6为大豆rna提取物及gma-mir159a对结肠炎模型小鼠中tnf-α及il-1β含量的影响。
具体实施方式
下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。
下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。
1.材料：caco-2细胞株、ncm460细胞株购自上海中科院细胞库；胎牛血清（fetalbovineserum，fbs）、dmem培养基、edta-胰酶（0.05%）、penicillin-streptomycin（100×）、pbs磷酸盐缓冲液购自美国gibco公司；mirnamimics、rnase-freeh2o购自生工生物工程（上海）股份有限公司；lipofectamine3000、opti-mem培养基购自美国invitrogen公司；二甲基亚砜（dmso）购自美国sigma公司；噻唑蓝（mtt）、1%多聚甲醛溶液购自北京索莱宝科技有限公司；c57bl/6雄性小鼠购自无锡菩禾生物医药技术有限公司；福尔马林购自美国sigma公司；葡聚糖硫酸钠(dextransodiumsulfate，dss，mw：36000-50000da)购自美国mpbio公司；苏木素、伊红、cd11b抗体、二抗（hrp标记山羊抗兔）购自武汉赛维尔生物科技有限公司；其他试剂为国产分析纯。
2.主要仪器与设备：生物安全柜购自thermofisher（中国）公司；mze多功能酶标仪购自moleculardevices（美国）公司；sl16r台式离心机购自thermofisher（中国）公司；二氧化碳培养箱购自thermofisher（中国）公司；bh-2型显微镜购自olympus（日本）公司。
实施例1大豆rna提取物的制备及mirnas鉴定
采用常规方法从大豆种子中获得大豆rna提取物。具体方法如下：将大豆种子于液氮中快速研磨，将得到的大豆粉末立刻转移至含有trizol试剂（购自美国invitrogen公司）的离心管中，其中大豆粉末的总体积不能超过所用trizol体积的10％。室温下放置10min，然后加入trizol试剂体积1/5的氯仿，盖紧离心管，剧烈震动15s，常温放置5min，于4℃下12000g离心15min。离心后液体分为三层（上层无色液体为rna，中层白色为dna，底层红色为蛋白质），小心吸取上层无色液体移入新的离心管中，加入等体积异丙醇，混匀后室温放置10min，在4℃下12000g离心10min，去除上清，留取管底沉淀。加入trizol试剂相同体积的75%乙醇溶液，轻轻洗涤沉淀，在4℃、7500g离心5min，去除上清，再次重复75%乙醇溶液洗涤步骤。在超净台中自然静置干燥5-10min以去除残留乙醇，加入适量体积rnase-freeh2o溶解，得到大豆rna提取物。
对大豆rna提取物中的mirnas进行测序，由生工生物工程股份有限公司（上海，中国）完成。测序原理如下：经过3'末端衔接子连接，逆转录引物杂交和5'末端衔接子连接的处理后，小片段rna被反转录成cdna，并扩增17个循环。然后从page凝胶中分离出约140-150bp的片段，并使用hiseq2500进行测序。生成数据后，执行读取的质量控制和处理以获得干净的读取。最后，与mirbase数据库22.0进行比对，将与参考mirnas相比具有相同序列和长度的候选序列视为mirnas匹配序列。
由测序结果可知，大豆rna提取物中含有297个已知大豆mirnas，分属于120个已知大豆mirnas家族，其中含量排在前15位的mirnas家族占大豆rna提取物的99.9%。大豆rna提取物中排在前15位的mirnas家族的种类及水平如图1所示。
大豆rna提取物中含有序列（seqidno:1）如下的mirna：5'-uuuggauugaagggagcucua-3'，该序列属于gma-mir159家族，命名为gma-mir159a，送生工生物工程股份有限公司（上海，中国）进行合成，以进行下述试验。
另外，设计乱序mirna模拟物作为阴性对照进行下述试验，其序列（seqidno:2）如下：5'-uucuccgaacgugucacgu-3'，送生工生物工程股份有限公司（上海，中国）进行合成。
实施例2大豆rna提取物及gma-mir159a对正常结肠上皮细胞ncm460增殖活性的影响
通过mtt测定法检测实施例1制备的大豆rna提取物及采用化学合成法制备的gma-mir159a对正常结肠上皮细胞ncm460增殖活性的影响。
将ncm460细胞培养在96孔板中，每孔中有3×103个细胞，大豆rna组、gma-mir159a组、对照组及正常组分别设有6个孔。其中大豆rna组的每孔中添加终浓度为40μg/ml的大豆rna提取物，gma-mir159a组的每孔中添加终浓度为50nm的gma-mir159a，对照组中添加终浓度为50nm的乱序mirna模拟物，正常组不添加任何药物。另设空白组，无细胞。转染24h、48h和72h后，每孔中加入20μlmtt试剂（5mg/ml），并孵育4h。孵育后，除去培养基，并向每个孔中添加100μl二甲基亚砜（dmso），孵育15min后，在570nm下测量样品的吸光度。按照如下方法计算各组细胞增殖率：细胞增殖率=（样品od值-空白组od值）/(对照组od值-空白组od值)。
由图2实验结果可知，与正常组及对照组相比，大豆rna提取物及gma-mir159a处理24h、48h及72h，对ncm460的增殖活性无显著性影响（p>0.05），表明大豆rna提取物及gma-mir159a对人正常结肠上皮细胞无毒害作用，具有良好的安全性。
实施例3大豆rna提取物及gma-mir159a对结肠炎模型小鼠的影响
（1）造模及给药
从菩禾生物医学技术有限公司（中国无锡）购买了6周龄的雄性c57bl/6小鼠。将50只小鼠随机分为5组，每组10只，分别为正常组、模型组、模型 乱序rna组、模型 rna组和模型 gma-mir159a组。除正常组外，其他组采用如下方法构建结肠炎小鼠模型：实验小鼠自由饮用2%dss（葡聚糖硫酸钠）水溶液，持续7天；然后再饮用正常饮用水（双蒸水）14天。将上述过程重复三个循环，以构建结肠炎小鼠模型。
在构建结肠炎小鼠模型过程中，模型组小鼠无其他药物灌胃；模型 rna组小鼠除了给予结肠炎模型药物外，每天采用大豆rna提取物灌胃，剂量为80μg/只；模型 gma-mir159a组小鼠，除了给予结肠炎模型药物外，每天采用gma-mir159a灌胃，剂量为0.3nmol/只；模型 乱序rna组小鼠，除了给予结肠炎模型药物外，每天采用乱序mirna模拟物灌胃，剂量为0.3nmol/只；另外，正常组小鼠正常饲养，不给予任何药物。
造模结束后，处死小鼠，测量小鼠结肠长度，然后收集结肠组织用于he染色及免疫组化分析，收集血浆以检测炎症因子。
（2）小鼠结肠长度检测结果
图3实验结果表明，与正常组相比（结肠长度为6.9±0.4cm），模型组及模型 乱序rna组的结肠长度显著降低（p<0.01），分别为5.9±0.7cm及5.5±0.3cm。与模型 乱序rna组相比，大豆rna提取物及gma-mir159a显著恢复了肠炎小鼠的结肠长度（p<0.05），分别为7.0±0.5cm及6.8±1.0cm。本实验结果表明，gma-mir159a及大豆rna提取物能够显著改善结肠炎小鼠的结肠长度。
（3）he染色结果
将各组小鼠的结肠组织进行he染色，具体方法如下：将结肠组织采用福尔马林固定，然后用pbs清洗3次，依次放入乙醇中进行梯度脱水1h。随后，将结肠组织取出，置于二甲苯溶液中进行透明处理2次，每次静置1h，再将组织转入54℃石蜡中进行浸蜡包埋。之后于56-58℃进行石蜡包埋，待室温冷却后切片，然后置于温水中使其展开，用载玻片捞取并烘干。然后再次置于二甲苯溶液中进行脱蜡处理，再将切片置于100%、95%、85%、75%乙醇溶液中复水各1min。然后，将切片用苏木素染色5min，1%盐酸溶液分化5-10s，水洗两次，再用伊红染色2min。再次进行乙醇脱水处理，再用二甲苯溶液分别处理3min、5min。最后用中性树胶封片，于光学显微镜下根据病理学的标准进行组织学分析。
由图4可见，与正常组相比，模型组及模型 乱序rna组中肠道粘膜遭到严重破坏，隐窝消失，而大豆rna提取物及gma-mir159a改善了肠道粘膜的损伤，隐窝恢复，证明了大豆rna提取物及gma-mir159a能够防止结肠炎小鼠中肠道组织的破坏。
（4）大豆rna提取物及gma-mir159a对结肠炎模型小鼠结肠中cd11b表达的影响
检测各组小鼠结肠中cd11b表达情况，以大豆rna提取物及gma-mir159a对结肠炎模型小鼠结肠中cd11b表达的影响。将小鼠的结肠组织进行石蜡切片，脱蜡并脱水。然后，将组织切片置于盛满edta抗原修复缓冲液（主要成分为乙二胺四乙酸二钠，ph9.0）的修复盒中于微波炉内进行抗原修复，自然冷却后用pbs洗涤3次，每次5min。放入3%双氧水溶液，室温避光孵育25min以阻断内源性过氧化物酶，将玻片置于pbs中在脱色摇床上晃动洗涤3次，每次5min。接下来，在组化圈内滴加3%bsa溶液均匀覆盖组织，室温封闭30min以封闭非特异结合位点。然后，轻轻甩掉封闭液，在切片上滴加pbs稀释的cd11b抗体，切片平放于湿盒内4℃孵育过夜。然后，玻片置于pbs（ph7.4）中在脱色摇床上晃动洗涤3次，每次5min。切片稍甩干后在圈内滴加与一抗相应种属的二抗（hrp标记山羊抗兔）覆盖组织，室温孵育50min。再次利用pbs洗涤3次，切片稍甩干后在圈内滴加新鲜配制的dab显色液，显微镜下控制显色时间，阳性为棕黄色，自来水冲洗切片终止显色。然后，苏木素复染3min左右，自来水洗，苏木素分化液分化数秒，自来水冲洗，苏木素返蓝液返蓝，流水冲洗。最后，将切片脱水透明，中性树胶封片。利用显微镜镜检，使用软件进行图像采集分析。苏木素染细胞核为蓝色，dab显出的阳性表达为棕黄色。
由于cd11b参与单核细胞、巨噬细胞和粒细胞等炎症细胞的粘附相互作用，因此其含量在一定程度上反映了组织内的炎症水平。如图5所示，与正常组相比，模型组小鼠中cd11b阳性细胞的数量（深棕色区域）明显增加，但是大豆rna提取物及gma-mir159a减少了模型小鼠中cd11b阳性细胞的数量，表明大豆rna提取物及gma-mir159a可以有效防止免疫细胞的浸润，缓解结肠炎小鼠体内的炎症水平。
（5）大豆rna提取物及gma-mir159a对结肠炎模型小鼠中il-1β及tnf-α含量的影响
根据制造商的说明书，使用小鼠il-1β和tnf-αelisa试剂盒测定小鼠血浆中il-1β和tnf-α的含量。
从图6可见，正常组il-1β、tnf-α的含量分别为15.33±2.00pg/ml及115.70±17.95pg/ml；模型组中il-1β、tnf-α的含量分别为35.33±5.95pg/ml及282.74±67.78pg/ml；模型 乱序rna组il-1β、tnf-α的含量分别为38.74±4.17pg/ml及281.07±24.04pg/ml；模型 rna组小鼠，il-1β含量20.88±4.88pg/ml，tnf-α的含量为178.80±51.22pg/ml；模型 gma-mir159a组小鼠，il-1β含量31.08±3.07pg/ml，tnf-α的含量为215.64±12.01pg/ml。
与正常组相比，模型组及模型 乱序rna组中il-1β和tnf-α的含量显著增加（p<0.01），但是大豆rna提取物及gma-mir159a显著改善了结肠炎小鼠体内的炎症水平（p<0.01），il-1β含量分别降低为20.88±4.88pg/ml、31.08±3.07pg/ml，tnf-α的含量分别降低为178.80±51.22pg/ml、215.64±12.01pg/ml，表明大豆rna提取物及gma-mir159a在预防和改善结肠炎中的重要作用。
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<110>南京财经大学
<120>大豆rna提取物在制备预防及治疗肠炎的药物中的应用
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<212>rna
<213>大豆
<400>1
uuuggauugaagggagcucua21
1.大豆rna提取物在制备预防及治疗肠炎的药物中的应用。
2.根据权利要求1所述应用，其特征在于：所述大豆rna提取物含有序列如seqidno:1所示的mirna。
3.根据权利要求1或2所述的应用，其特征在于：所述肠炎包括结肠炎和其他肠炎性疾病。
4.大豆rna提取物在制备具有预防和治疗肠炎性疾病的功能性食品中的应用。
5.根据权利要求4所述应用，其特征在于所述大豆rna提取物含有序列如seqidno:1所示的mirna。
6.用于预防及治疗肠炎的药物或功能性食品，其特征在于含有大豆rna提取物。
7.根据权利要求6用于预防及治疗肠炎的药物或功能性食品，其特征在于所述大豆rna提取物含有序列如seqidno:1所示的mirna。
8.序列如seqidno:1所示的mirna在制备预防及治疗肠炎的药物中的应用。
9.用于预防及治疗肠炎的药物或功能性食品，其特征在于含有序列如seqidno:1所示的mirna。
技术总结